Význam, teorie a praxe používání přípravků na bázi huminových kyselin
Přítomnost mykotoxinů v krmivech vede k onemocněním hospodářských zvířat a jejich vstupu do živočišných produktů, což ohrožuje lidské zdraví. Zkoumali jsme schopnost huminových kyselin snižovat příjem mykotoxinů do těla. Bylo prokázáno, že zavedení huminových kyselin spolu s krmivem kontaminovaným mykotoxiny snižuje poškození vnitřních orgánů. Je pozorováno snížení sérové aktivity aspartátaminotransferázy (AST), alaninaminotransferázy (ALT), alkalické fosfatázy (ALP), laktátdehydrogenázy (LDH) a kreatinkinázy (CK). Zavedení huminových kyselin má antioxidační účinek. Bylo prokázáno snížení akumulace produktů peroxidace lipidů. Huminové kyseliny zvyšují aktivitu katalázy a zvyšují obsah α-tokoferolu a retinolu. Zlepšuje metabolismus bílkovin a lipidů. Použití huminových kyselin k prevenci mykotoxikózy chrání krvetvorné orgány a imunitní systém před poškozením mykotoxiny. Zavádění huminových kyselin do stravy hospodářských zvířat snižuje riziko pronikání mykotoxinů do produktů získaných z hospodářských zvířat.
poškození vnitřních orgánů
krevní obraz
metabolismus
mykotoxikóza
huminové kyseliny
1. Biologicky aktivní krmná směs pro sající selata / Trukhachev V.I., Filenko V.F., Starodubtseva G.P., Zadorozhnaya V.N., Lyubaya S.I. : patent na vynález RUS 2393716 — 17.12.2007.
2. Biologicky aktivní krmná směs pro sající selata / Trukhachev V.I., Filenko V.F., Starodubtseva G.P., Zadorozhnaya V.N., Lyubaya S.I. : patent na vynález RUS 2393717 — 29.12.2007.
3. Biologicky aktivní krmná směs pro sající selata / Trukhachev V.I., Filenko V.F., Starodubtseva G.P., Zadorozhnaya V.N., Lyubaya S.I. : patent na vynález RUS 2393718 — 29.12.2007.
4. Velká lékařská encyklopedie / kap. vyd. ak. B.V. Petrovský. — M.: Sovětská encyklopedie, 1974. — V. 1. — 576 s.
5. Volosová E.V., Bezgina Yu.A., Maznitsyna L.V. Stabilizace enzymů třídy proteázy ve struktuře biopolymerních materiálů // Moderní problémy vědy a vzdělávání. — 2013. — č. 1. — S. 343-343.
6. Grekova A.A., Maltsev A.N., Abakin S.S. “Kormogumat AS” pro regulaci metabolismu minerálů u prasat s mykotoxikózou // Veterinární věda. — 2009. — č. 5. — S. 48-50.
7. Grekova A.A., Maltsev A.N. Použití “Gumivalu” k léčbě prasat s mykotoxikózou // Veterinární věda. — 2010. — č. 2. — S. 10-13.
8. Grekova A.A., Maltsev A.N. Terapeutické účinky léku “Gumival” při léčbě prasat s mykotoxikózou // Veterinární patologie. — 2010. — č. 2. — S. 56-58.
9. Kondrakhin I.P., Kurilov N.V., Malakhov A.G. Stanovení proteinových frakcí krevního séra turbidimetrickou metodou // Klinická diagnostika ve veterinární medicíně. — M.: Agropromizdat, 1985. — S. 74-75.
10. Koncepce přípravy a aplikace krmných přísad nové generace “Biomost” / Trukhachev V.I., Zadorozhnaya V.N., Filenko V.F., Starodubtseva G.P., Lyubaya S.I. // Výroba píce. — 2008. — č. 4. — S. 31-32.
11. Koroljuk M.A. Metoda stanovení aktivity katalázy // Laboratorní práce. — 1988. — č. 1.- S. 16-19.
12. Orlov D.S. Praktický výcvik v chemii humusu. — M.: Nakladatelství Moskevské státní univerzity, 1981. — S. 272.
13. Perspektivy pěstování stévie a výroby produktů na ní založených / Trukhachev V.I., Starodubtseva G.P., Bezgina Yu.A., Lyubaya S.I., Veselova M.V. // Bulletin AIC of Stavropol. — 2012. — č. 1. — S. 22-25.
14. Pogarskaya N.V., Frantseva N.N., Chernitsova M.A. Získávání melaninů z hmyzu a možnost jejich použití v případě ekologicky nepříznivých dopadů na tělo // Vestnik APK Stavropol. — 2013. — č. 1. — S. 107-109.
15. Stalnaya I.D. Metoda stanovení obsahu malondialdehydu // Moderní metody v biochemii. — M.: Medicína, 1977. — S. 63-69.
16. Truchačev V.I. Krmné přísady nové generace v chovu prasat / Trukhachev V., Filenko V., Rastovarov E., Zadorozhnaya V., Lyubaya S., Chabaev M. // Kombinované krmivo. — 2009. — Č. 6. — S. 97.
17. Tutelyan V.A., Kravchenko L.V., Sergeev A.Yu. Mykotoxiny // Pokroky v lékařské mykologii / ed. Sergeeva Yu.V. — M.: National Academy of Mycology, 2007. — V. 1. — S. 283-304.
18. Bensassi F. Cesta deoxynivalenolem indukované apoptózy v buňkách lidského karcinomu tlustého střeva // Journal Toxicology. — 2009. — Sv. 264, č. 2. — R. 104-109.
19. Elfarissi F., Pefferkorn E. Fragmentace kaolinitových agregátů indukovaná iontově výměnnými reakcemi ve vrstvách adsorbovaných huminových kyselin // Journal Advances in Colloid and Interface Science. — 2000. — Sv. 221, č. 1. — S. 64-74.
20. Fein JB Experimentální studie adsorpce huminových kyselin na bakterie a minerální povrchy Al-oxid // Chemická geologie. — 1999. — Sv. 162. — S. 33-45.
21. Jansen van Rensburg C. Hodnocení huminové kyseliny jako pojiva aflatoxinu u brojlerových kuřat in vitro a in vivo // Journal Poultry Science. — 2006. — Sv. 85. — S. 1576-1583.
22. Madronová L. Huminové kyseliny z uhlí severočeského uhelného pole. III. Vazebné vlastnosti huminových kyselin na kov — měření ve sloupcovém uspořádání // React Funct Polym. — 2001. — Sv. 47. — S. 119-123.
23. Sabater-Vilar M. Hodnocení adsorbentů in vitro zaměřené na prevenci deoxynivalenolových a zearalenonových mykotoxikóz // Journal Mycopathologia. — 2007. — Sv. 163. — S. 81-90.
Huminové kyseliny mají schopnost vázat: těžké kovy [21], minerály [18] a mikroorganismy (Bacillus subtilis) [19]. Přesto se huminové kyseliny jako adsorbent mykotoxinů nepoužívají. Existuje pouze několik studií, které ukazují, že huminové kyseliny mohou in vitro vázat deoxynivalenol (DON) a zearalenon [22]. Byla také získána data ukazující schopnost huminových kyselin (oxyhumát) adsorbovat aflatoxin B1 a účinky oxyhumátu převyšují účinky zavádění pivovarských kvasnic do stravy [20].
Cílem naší studie bylo prozkoumat možnosti využití huminových kyselin pro prevenci mykotoxikózy u zvířat. Experiment byl proveden na laboratorních zvířatech (morčatech) o hmotnosti 450 ± 25 g, která byla rozdělena do 4 skupin po 6 zvířatech v každé skupině. Po dobu 1 měsíce byla zvířatům v 1. skupině podávána pšenice kontaminovaná mykotoxiny v těchto koncentracích: obsah T-2 toxinu byl 1,04 mg/kg, deoxynivalenon – 0,05 mg/kg, zearalenon – 0,2 mg/kg. Obilí bylo dodáváno bez omezení. Jinak strava odpovídala krmným normám pro morčata [1-3; 5; 10].
Zvířatům 2. skupiny byla také podávána pšenice kontaminovaná mykotoxiny a huminovými kyselinami v dávce 0,175 mg na 1 kg živé hmotnosti po dobu 30 dnů intramuskulárně jako součást léku „Ligfol“ (LLC „Ligfol“, Rusko). Jinak strava odpovídala krmným normám pro morčata. Zvířatům 3. skupiny spolu s obilím kontaminovaným mykotoxiny byly podávány huminové kyseliny v dávce 0,2 mg na 1 kg živé hmotnosti 1x denně po dobu 30 dnů jako součást léku „Gumival“ (OOO „Ligfol“, Rusko), který byl smíchán s obilím kontaminovaným mykotoxiny. Jinak strava odpovídala krmným normám pro morčata.
Kontrolní zvířata dostávala standardní stravu. Obilí obsažené ve stravě neobsahovalo mykotoxiny. Na konci experimentu byla zvířatům v anestezii odebrána krev z pravé síně pro biochemické a hematologické studie.
Kvantitativní stanovení mykotoxinů v krmivu bylo provedeno pomocí testovacích systémů Ridascreen (výrobce R-Biofarm, Německo). Obsah malondialdehydu (MDA) byl stanoven spektrofotometrickou metodou pro měření sloučenin, které reagují s kyselinou thiobarbiturovou [14] a aktivita katalázy byla stanovena spektrofotometricky při reakci H.2О2 s molybdenanem amonným [11], obsah a-tokoferolu a retinolu byl stanoven kapalinovou chromatografií na chromatografu Milichrom 4 (Rusko), obsah cholesterolu, AST, ALT, glukózy, močoviny a celkových lipidů v krevním séru byl stanoven pomocí testovacích systémů od firmy Lachema (Česká republika).
Chemická hemolýza erytrocytů byla indukována kyselinou chlornou (HOCl), jedním z nejsilnějších induktorů tvořených neutrofily za účasti enzymu myeloperoxidázy. Suspenze erytrocytů (Ht 0,5 %, isotonický 0,05 M pufr fosforečnanu sodného) byla inkubována po dobu 30 minut při 22 °C s HOCI v koncentraci 1 mM. Proces hemolýzy byl v supernatantu zaznamenáván množstvím hemoglobinu uvolněným ze zničených erytrocytů po centrifugaci suspenze (3000 g po dobu 10 minut) optickou hustotou při vlnové délce 414 nm. Množství hemoglobinu uvolněného během osmotické hemolýzy stejného množství erytrocytů v destilované vodě bylo považováno za 100% hemolýzu.
Celkový protein byl stanoven v krevním séru pomocí refraktometru IRF-452 B2M (Rusko); Poměr proteinových frakcí byl stanoven spektrofotometricky pomocí turbidimetrické metody [9].
Statistické zpracování výsledků bylo provedeno pomocí Studentova t-testu. Výsledky byly považovány za významné na úrovni p.
Pro diagnostiku stupně poškození vnitřních orgánů mykotoxiny byla studována sérová aktivita „markerových“ enzymů. Příjem mykotoxinů s krmivem vede ke zvýšení sérové aktivity aspartátaminotransferázy (AST) 1,5krát, alaninaminotransferázy (ALT) 3,1krát, alkalické fosfatázy (ALP) a laktátdehydrogenázy (LDH) 5krát, což svědčí o poškození vnitřních orgánů (tabulka 1). Všechny tyto enzymy jsou intracelulární a jejich výskyt v krvi naznačuje lýzu tkáňových buněk. Abychom vyloučili poškození srdce mykotoxiny, provedli jsme analýzu aktivity sérové kreatinkinázy (CK). V našem experimentu se aktivita kreatinkinázy zvýšila při konzumaci krmiva kontaminovaného mykotoxiny, ale tento ukazatel zůstal v přijatelném rozmezí (tab. 1). Experimentální data, která jsme získali, ukazují, že mykotoxiny poškozují vnitřní orgány, s výjimkou srdce. Patogeneze těchto poruch je dána cytotoxickou aktivitou mykotoxinů [16].
Zavádění huminových kyselin intramuskulárně nebo společně s krmivem významně snižuje sérovou aktivitu AST, ALT, ALP, LDH a CK (tab. 1). To ukazuje na ochranný účinek huminových kyselin. Navíc ochranné účinky huminových kyselin jsou prakticky nezávislé na způsobu jejich podání. Zavádění huminových kyselin spolu s krmivem má však výraznější preventivní účinek. Studie stavu proantioxidační rovnováhy v těle morčat vystavených mykotoxinům prokázala aktivaci procesu peroxidace lipidů (LPO), o čemž svědčí zvýšený obsah malondialdehydu (MDA) v krvi a pokles antioxidační ochrany. Ve srovnání s kontrolou byl pozorován významný pokles krevních hladin vitamínů E a A a katalázové aktivity (tabulka 1).
Tabulka 1 – Biochemické parametry krve morčete (M±m, n=6)
I experimentální (mykotoxikóza)
II experimentální (ligfol)
III experimentální (gumival)
Vitamín E (mcg/ml)
Výsledek Er, (% hemolýzy)
Celkové lipidy (g/l)
Leukocyty (* 10 9 /l)
Erytrocyty (* 10 12 /l)
Zavedení huminových kyselin snižuje intenzitu peroxidace lipidů. Je třeba poznamenat, že zavedení huminových kyselin spolu s krmivem snižuje obsah MDA na kontrolní hodnoty. Podobné výsledky pozorujeme ve vztahu k antioxidačnímu systému. Zavádění huminových kyselin spolu s postiženým krmivem normalizuje obsah antioxidačních vitamínů A a E a výrazněji stimuluje aktivitu katalázy ve srovnání s intramuskulárním podáváním huminových kyselin (tab. 1). To se vysvětluje schopností huminových kyselin vázat mykotoxiny v gastrointestinálním traktu (GIT) [6; 7]. Vazba mykotoxinů huminovými kyselinami snižuje jejich vstup z gastrointestinálního traktu do krve a snižuje aktivaci peroxidace lipidů ve tkáních. Antioxidační účinek huminových kyselin lze vysvětlit také přítomností stopových prvků Fe, Zn, Cu, Mg, Se atd. ve formě nečistot, což jsou koenzymy hlavních antioxidačních enzymů (superoxiddismutáza, kataláza, glutathionperoxidáza). Antioxidační vlastnosti huminových kyselin při intramuskulárním podání lze vysvětlit přítomností chinonových skupin v jejich molekulách. Antioxidanty snižují poškození vnitřních orgánů volnými radikály, které vznikají při vstupu mykotoxinů do těla [8; 13; 16]. Aktivace procesů volných radikálů v důsledku konzumace krmiva kontaminovaného mykotoxiny vede ke zvýšení odolnosti erytrocytů vůči kyselinám, o čemž svědčí snížení procenta hemolýzy erytrocytů (tab. 1). Okamžitá reakce erytrocytů na změny intenzity peroxidace lipidů při vstupu mykotoxinů do organismu charakterizuje vysoký stupeň účasti těchto buněk nejen v hemoreologii, ale i v antioxidačním obranném systému [7]. Vazba erytrocytů jako první reaguje na změny aktivity oxidace volných radikálů v krvi při konzumaci krmiva kontaminovaného mykotoxiny.
Zavedení huminových kyselin snižuje aktivitu peroxidace lipidů a normalizuje fyzikální vlastnosti membrán erytrocytů. Největší účinnost je pozorována, když se huminové kyseliny přidávají společně s postiženým krmivem. U mykotoxikózy je pozorován významný pokles obsahu celkových bílkovin v krvi (Tabulka 1). Kromě snížení obsahu bílkovin, v našem experimentu je také pozorována změna poměru proteinových frakcí. Dochází ke snížení poměru albumin/globulin. Ke snížení obsahu albuminu v krvi dochází v důsledku jejich využití retikuloendoteliálním systémem při modifikaci mykotoxiny, protože většina látek, které se dostávají do krve, včetně mykotoxinů, je fixována na albuminy bez ohledu na to, zda se jedná o neutrální, kyselé nebo zásadité sloučeniny [4; 16]. Prokázali jsme významný pokles obsahu albuminu a γ-globulinů v krevním séru oproti kontrole. Je také pozorováno zvýšení obsahu močoviny v krevním séru. Podle literárních údajů je to typické pro nadměrný příjem látek obsahujících dusík v důsledku zvýšeného odbourávání tkáňových bílkovin [4].
Zavedení huminových kyselin vede ke zvýšení obsahu celkových bílkovin v krvi. Mění se poměr proteinových frakcí. Významně se zvyšuje obsah albuminů a γ-globulinů a snižuje se obsah α- a β-globulinů (tab. 1). Obsah močoviny v krevním séru mírně klesá. To lze vysvětlit zvýšeným odbouráváním bílkovin během procesu opravy tkáně poškozené mykotoxiny [4]. Jedním z mechanismů terapeutického působení huminových kyselin je tedy normalizace metabolismu bílkovin. To je způsobeno detoxikačními, hepatoprotektivními a antioxidačními účinky huminových kyselin. Nárůst množství g-globulinů v krvi spojujeme s poklesem poškození imunokompetentních buněk mykotoxiny. Při mykotoxikóze je tedy primárně poškozen imunitní systém těla [16]. Při zavedení mykotoxinů je pozorováno výrazné zvýšení obsahu cholesterolu a lipoproteinů s nízkou hustotou (LDL) v krevním séru. Mírně se zvyšuje obsah celkových lipidů (tab. 1). Tyto změny spojujeme s aktivací procesu LPO a adaptivními změnami na oxidační stres [7; 8].
Zavedení huminových kyselin snižuje obsah cholesterolu a LDL (tabulka 1). Tyto výsledky vysvětlujeme antioxidačním působením huminových kyselin. Obsah celkových lipidů se oproti kontrole mírně zvýšil a oproti skupině dostávající krmivo kontaminované mykotoxiny se nezměnil. Ke zvýšení celkových lipidů v této skupině dochází v důsledku fosfolipidů a neutrálních lipidů, protože obsah cholesterolu a LDL klesá se zavedením huminových kyselin. To ukazuje na zlepšení metabolismu lipidů, a zejména fosfolipidů, což vysvětluje naše údaje o změnách fyzikálních vlastností membrán erytrocytů.
Při konzumaci potravin kontaminovaných mykotoxiny se zvyšuje hladina glukózy v krvi. Tato hodnota je však ve fyziologické normě. Zavedení huminových kyselin nemění hladinu glukózy v krvi (tabulka 1).
V našem experimentu je při vstupu mykotoxinů do těla pozorován mírný pokles počtu erytrocytů, obsahu hemoglobinu a snížení barevného indexu (CI). Zvýší se hematokrit (tabulka 1). Tyto změny se vysvětlují zvýšením odumírání erytrocytů při jejich poškození mykotoxiny a narušením erytropoézy [7; 17].
Použití huminových kyselin zlepšuje fyziologické parametry krve. Je pozorováno zvýšení obsahu hemoglobinu, počtu erytrocytů, barevného indexu a hematokritu (tabulka 1). Podle našeho názoru je normalizace hematologických parametrů při použití huminových kyselin spojena se snížením poškození ledvin a jater a normalizací minerálního složení krve [6; 8].
Při požití mykotoxinů s krmivem je pozorován nárůst obsahu leukocytů (tabulka 1). Zvýšení obsahu leukocytů spojujeme s aktivací procesu nekrózy v hepatocytech, způsobeného jak oxidačním stresem, tak přímým účinkem mykotoxinů na hepatocyty [4; 8; 16]. Zavedení huminových kyselin snižuje počet leukocytů, což může naznačovat pokles zánětlivých procesů v těle [4].
Na základě údajů, které jsme získali, a literatury tedy můžeme konstatovat, že huminové kyseliny jsou schopny adsorbovat a odstraňovat mykotoxiny z gastrointestinálního traktu, a tím omezovat proces jejich hromadění v těle. Navíc na základě dat, která jsme získali, můžeme usoudit, že huminové kyseliny jsou schopny interagovat s mykotoxiny v těle a snižovat poškození vnitřních orgánů při intramuskulárním podání, což umožňuje jejich použití k léčbě mykotoxikóz.
Vzhledem k tomu, že podle literárních údajů jsou mykotoxiny schopny se hromadit v těle a uplatňovat svůj toxikologický účinek, pokud jsou přítomny v krmivech v koncentracích nižších než MAC [16], použití huminových kyselin pro prevenci mykotoxikózy sníží náklady na léčbu a preventivní opatření, zlepší ukazatele produktivity a zvýší ziskovost chovu hospodářských zvířat [6-9; 15].
Recenzenti:
Belyaev V.A., doktor veterinárních věd, děkan Fakulty veterinárního lékařství Stavropolské státní agrární univerzity, Stavropol.
Lysenko I.O., doktor biologických věd, vedoucí katedry ekologie a krajinného stavitelství, Stavropolská státní agrární univerzita, Stavropol.
Efektivita rozvoje odvětví živočišné výroby určuje ekonomiku a potravinovou bezpečnost země. Nedostatečné zásobování zvířat a ptáků kompletním krmivem a zejména drahými krmnými přísadami a zdroji biologicky aktivních látek je brzdícím faktorem slibného rozvoje průmyslu. A použití dovážených terapeutických a profylaktických látek zvyšuje náklady na produkty živočišné výroby a snižuje jejich ziskovost. V důsledku toho se výzkumná a vývojová práce s cílem nalézt místní netradiční zdroje, které mohou uspokojit potřeby živočišného průmyslu na biologicky aktivní přísady, stává obzvláště důležitou.
Různé krmné přísady přírodního i umělého původu jsou široce používány ve stravě hospodářských zvířat a ptáků k doplnění chybějících nutričních prvků. Patří mezi ně organominerální minerály, jako je křída, lastura a travertin.
Syntetická nebílkovinná dusíkatá hnojiva solí uhličitanu amonného, přípravky chlorečnanu amonného a močoviny a fosforečnanu amonného našly zvláštní význam a široké použití v chovu zvířat, zejména u přežvýkavců. Pozitivní výsledky byly dosaženy v chovu zvířat s použitím komplexních přírodních sloučenin bohatých na minerály a vitamíny, jako je sapropel, rašelina apod. Používají se jak v čisté formě, tak jako součást krmných přípravků obohacených o močovinu, eleuterokok, dubový extrakt [9, 11].
Pro zvýšení stravitelnosti krmiva, jeho konzervace a bezpečnosti se používá celá řada syntetických produktů mikrobiologické syntézy – enzymy, hormony, antibiotika, antioxidanty atd. Zpravidla jsou součástí vitamino-minerálních, profylaktických a terapeutických premixů.
Hledání nových netradičních směrů ve výrobě krmiv a chovu zvířat, umožňujících řešit problém jak v oblasti zlepšování zdravotního stavu hospodářských zvířat, tak v systému zvyšování jejich užitkovosti pomocí krmných aditiv, s přihlédnutím k vysokým nárokům na ekologii masných, mléčných a vaječných výrobků, cíleně vedlo ke zvýšení objemu výzkumu využití alkalických solí přírodních huminových kyselin v chovu zvířat.
Chemicky je huminová kyselina dlouhý řetězec molekul, které se uvolňují z půdy, rašeliny nebo hnědého uhlí. V komplexní kombinaci s kyselinou fulvovou tvoří huminové kyseliny biologicky dostupný komplex pro zlepšení zdraví živého organismu. Jeho hodnota je dána přítomností více než 70 různých složek minerálů, více než 20 aminokyselin, vitamínů, přírodních polysacharidů, sterolů, hormonů, mastných kyselin, rostlinných pigmentů (flavonoidů), přírodních antioxidantů (katechiny). Složení tohoto komplexu obsahuje nesteroidní fytoestrogeny přírodního původu – isoflavonoidy, dále chinony s antibiotickými vlastnostmi a další užitečné složky. Tato koncentrace biologicky aktivních látek určuje rozmanitost pozitivních účinků huminových kyselin na živé organismy [12].
Podstatou interakce živé buňky s huminovými kyselinami je, že intaktní molekuly huminových kyselin a vysokomolekulární zbytky jejich intracelulárního trávení jsou lokalizovány v buněčných stěnách nebo ve vrstvě přímo sousedící s cytoplazmatickou membránou. V důsledku toho se na povrchu živé buňky objeví něco jako aktivní filtr, který váže ionty těžkých kovů do stabilních komplexů chelátového typu; zachycuje molekuly pesticidů a dalších organických xenobiotik a také váže volné radikály vzniklé v plazmatické membráně v důsledku peroxidace lipidů.
Tato interakce má za následek uvolnění energie, kterou namísto vynaložení na kompenzaci nepříznivých vlivů vnějšího prostředí využije samotná buňka k růstu a reprodukci, což v konečném důsledku vede ke zvýšení její konkurenceschopnosti i konkurenceschopnosti organismu jako celku [6, 7].
Experimentální výzkum a aplikace přípravků na bázi huminových kyselin probíhají v medicíně a veterinární vědě již od roku 1967. Na základě získaných výsledků byly stanoveny krmné standardy a doporučené terapeutické dávky léků, které vykazují pozitivní vlastnosti a mohou být použity jako terapeutické prostředky pro různá onemocnění gastrointestinálního traktu a metabolické poruchy spojené se střevními infekcemi. Důvodem jsou především antibakteriální a antivirové účinky huminových kyselin a také jejich adstringentní, antiresorpční a protizánětlivý charakter [3].
Testy přípravků huminových kyselin odhalily, že nemají karcinogenní, alergenní, anafylaktogenní, teratogenní ani embryotoxické vlastnosti. To umožňuje, aby byly klasifikovány jako neškodné pro zvířata a lidi, což poskytuje významné výhody oproti tradičním lékům. To umožňuje jejich použití k výrobě přírodních krmných přísad šetrných k životnímu prostředí a veterinárních léčiv pro ptáky, hospodářská zvířata, ryby a domácí mazlíčky.
Terapeutické a profylaktické vlastnosti huminových kyselin spočívají v jejich schopnosti obalit střevní sliznici zvířat a snížit nebo zcela zabránit vstřebávání toxických metabolických produktů po infekci, stejně jako při zkrmování nekvalitním krmivem. Huminové kyseliny jsou jednoduše přimíchány do krmiva, jsou velmi dobře snášeny a nemají žádné vedlejší účinky na organismus zvířete.
Při léčbě střevních onemocnění je pozorován pokles patologických impulzů z periferních nervových zakončení střeva a obnovení normální peristaltiky a tonusu. Jejich vlivem se u zvířat vystavených stresu obnovuje střevní imunita a pod mírným opalováním dochází ke ztluštění střevní sliznice, ke snížení její propustnosti a nadměrné sekrece tkáňového moku do lumen střeva. Tím se zabrání dehydrataci organismu [12].
Byl nashromážděn rozsáhlý materiál o vlivu přípravků obsahujících huminové kyseliny na imunitní stav zvířat. Huminové kyseliny prostřednictvím nezávislých receptorů umístěných ve střevní stěně (Peyerovy pláty) stimulují imunitní systém organismu k ochraně před cizími vlivy. Vlivem humátů se zesílí fagocytární funkce leukocytů, dodatečně se stimuluje obranyschopnost organismu, což snižuje mortalitu a pomáhá zvýšit míru přežití mláďat [3, 5, 8, 11].
U zánětlivých procesů v žaludku a střevech způsobených patogenní mikroflórou je první léčbou medikamentózní terapie antibiotiky zaměřená na ničení patogenních bakterií. Využívá se také substituční terapie probiotiky, která je zaměřena na kvantitativní vytěsnění patogenní mikroflóry ve prospěch hlavní fyziologické mikroflóry střeva. Za perspektivní alternativu antibiotik a probiotik při stabilizaci střevní mikroflóry jsou považovány přípravky huminových kyselin, které neméně úspěšně neutralizují patogenní mikroflóru a současně potlačují zánět a blokují místa adheze patogenních patogenů ve střevní sliznici. Bylo zjištěno, že huminové kyseliny vážou patogenní E. coli v průměru z 94 % a endotoxiny z 82 %. Bakterie a toxiny vázané huminovou kyselinou jsou z těla odstraněny přirozeně [3, 8].
Antivirový účinek huminových kyselin je považován za nejúčinnější v terapii zvířat, protože na zotavení se navíc podílí imunomodulační účinek léku na hostitelský organismus.
Vysoká biologická aktivita přípravků s huminovými kyselinami se projevuje i ve vztahu k houbovým chorobám, byl zaznamenán jejich fungicidní účinek proti candida albicans, která obývá gastrointestinální trakt zvířat i lidí.
Přípravky huminových kyselin konkurují běžným minerálním adsorbentům (aktivní uhlí, jíl). Díky svým chemickým vlastnostem pomáhají vázat kationty těžkých kovů, vykazují adsorpční vlastnosti pro dusitany, dusičnany, insekticidy a další antinutriční látky, které se dostávají do gastrointestinálního traktu zvířat. Huminové kyseliny přitom prokluzují mezi klky střevního epitelu a vytvářejí ochranný film z nejjemnějších částic huminové kyseliny, který chrání tkáně epitelu a lymfatických uzlin.
Adsorpční účinek huminových kyselin je umocněn jejich schopností pronikat do tenkého střeva v nezměněné podobě a uplatnit svoji schopnost proti toxinům na správném místě, kde se toxické látky fixují, zpomaluje se jejich vstřebávání a urychluje se jejich odchod z těla stolicí.
Mechanismus terapie huminovými kyselinami se oproti antibiotikům projevuje poměrně pomalu, během 24-72 hodin. Současně dochází k postupnému odstraňování patogenní mikroflóry z těla a stimulaci tvorby protilátek, čímž se zvyšuje odolnost a obranné systémy zvířete.
Různorodé složení organických kyselin v přípravcích na bázi huminových kyselin napomáhá kromě působení enzymů rozkládat částice potravy, čímž pozitivně ovlivňuje stravitelnost a přeměnu krmiva. A to vede ke zvýšení produktivity a zvýšení živočišné výroby [1, 2, 4].
Experimenty prováděné na použití huminových kyselin jako přísad do krmiv a veterinárních léčiv neodhalily toxicitu, alergie ani jiné vedlejší účinky u zvířat, což je předpokladem pro široké použití těchto léčiv v chovu zvířat.
Prezentované výsledky četných a dlouhodobých studií ukazují absolutní bezpečnost huminových kyselin pro zvířata, lidi i životní prostředí. Je prokázán jejich pozitivní léčebný účinek na téměř všechny druhy zvířat. Zavedení huminových kyselin do stravy zvířat a ptáků vede k aktivaci jejich životních sil, rychlé adaptaci na měnící se podmínky prostředí, urychlení fermentace krmiva díky rozvoji prospěšné mikroflóry v gastrointestinálním traktu, růst stimulujícím a imunomodulačním účinkům [8-10].
REFERENCE
1. Bailey CA, White KE a Donke S L. 1996. Hodnocení menefeehumate TM na užitkovosti brojlerů. Nauka o drůbeži 75:84.
2. Eren M, Deniz G, Gezen SS a Turkmen I 2000. Účinky dietního humátu na růstovou výkonnost, koncentraci minerálů v séru a kostní popel brojlerů. Ankara Institute of Veterinary Medicine Fakultní časopis 47: 255−63.
3. Islám, K. M. S., A. Schuhmacher a J. M. Gropp. 2005. Huminové kyseliny v živočišné výrobě. Pákistán J. Nutr. 4(3):126-134.
4. Karaoglu M., Macit M., Esenbuga N., Durdag H., Turgut L., Bilgin OC, 2004: Vliv doplňkového humátu na různých úrovních na růst, porážku a vlastnosti jatečně upravených těl brojlerů. International Journal of Poultry Science sv. 3: 406-410.
5. Shermer CL, Maciorowski KG, Bailey CA, Byers FM a Ricke S. 1998. Metabolity slepého střeva a mikrobiální populace u kuřat konzumujících stravu obsahující těženou humátovou sloučeninu. Journal of the Science of Food and Agriculture 77: 479−86.
6. Birjukov, M.V. / Biologický účinek huminových kyselin na živé buňky // Rašelina při řešení problémů energetiky, zemědělství a ekologie. — Minsk, 2006. — S. 167−171.
7. Buzlama, V.S., Dolgopolov V.N., Safonov V.N. / Mechanismus účinku přípravků huminových látek / Výsledky a perspektivy použití huminových přípravků v produkčním chovu hospodářských zvířat, chovu koní a drůbeže // Sborník zpráv z konference. — M., 2006. — S. 24−33.
8. Gabdullin F.Kh., Zakirov T.M., A. Volkov.Kh., Shakirov Sh.K. / Vliv aktivované EPA “BioGumMix” na produktivitu telat v období po mléce // Vědecké poznámky Kazanské státní akademie veterinární medicíny pojmenované po N.E. — 2014. — T. 219. — S. 69−73.
9. Dolgopolov, V.N. / Zkušenosti s používáním Gumivalu pro zlepšení užitkovosti skotu, prasat a drůbeže / Výsledky a perspektivy použití huminových přípravků v produkčním chovu hospodářských zvířat, chovu koní a drůbeže // Sborník zpráv z konference. — M., 2006. — S.40 — 43.
10. Zakirov T. M., Yusupova G. R., Shakirov Sh K., Volkov A. Kh., Gabdullin F. Kh., Yakubova L. F. / Aktivovaný energetický proteinový koncentrát “BioGumMix” – nová krmná přísada pro dojnice // Vědecké poznámky Kazaňské státní akademie N. E. Veterinary Medicine. — 2014. — T. 220. — S. 100−104.
11. Zakirov T. M., Yusupova G. R., Shakirov Sh K., Gabdullin F. Kh., Yakubova L. F., Volkov A. Kh / Dynamika mléčné produktivity laktujících krav při krmení aktivovaným energeticko-proteinovým koncentrátem pojmenovaným po “BioGumMix” // Vědecké poznámky Státní akademie státu Kazaňská N. E. Bau. — 2014. — T. 220. — S. 104−108.
12. Platonov V. V., Eliseev D. N., Polovetskaya O. S., Khadartsev A. A. / Srovnávací charakteristiky strukturních znaků rašelinových huminových a hymatomelanových kyselin ve vztahu ke specifičnosti jejich fyziologického působení // Bulletin of New Medical Technologies. — 2010. — T. XVII. — č. 4. — S. 9−11.